EMMD - Électrochimie, Matériaux Moléculaires et Dispositifs

Les activités de recherche de l'équipe EMMD (Electrochimie, Matériaux Moléculaires et Dispositifs) portent sur les matériaux moléculaires, de la molécule au matériau et du matériau au dispositif. Les techniques électrochimiques sont employées pour synthétiser, immobiliser et détecter des espèces chimiques ou biologiques.

L'aspect synthétique concerne la synthèse et la fonctionnalisation de macrocycles (porphyrines et phthalocyanines) et de polymères. L'aspect analytique 1) exploite les propriétés redox de composés ou de couches sensibles (biomatériaux, polymères conducteurs, complexes à transfert de charge,…) pour la caractérisation et la détection de biomolécules ou de polluants chimiques à l'aide de capteurs; 2) permet d'appréhender les mécanismes réactionnels de processus moléculaires. Nos projets sont focalisés sur les applications dans les domaines de l'environnement, la santé et l'industrie agroalimentaire.

ROMIEU Anthony See the English profil sheet English (EN)

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  • ROMIEU Anthony
  • Statut : Professeur(e)
  • Équipe : PD2A
  • Fonction : Chercheurs et enseignants chercheurs
  • Seconde équipe : Search support
  • Fonction au sein de la deuxième équipe : Chercheurs et enseignants chercheurs
  • Tags : Bioconjugaison et peptides, Imagerie Moléculaire, Photophysique, Chimie de Synthèse
  • ORCID : 0000-0002-2300-4499
  • Adresse :

    ICMUB Institut de Chimie Moléculaire de l'Université de Bourgogne
    Bât. MIRANDE - Aille B - Bureau B-R27A
    9 Avenue Alain Savary
    21000 Dijon – France

  • Tél : (+33) 380 393 624
  • anthony.romieu@u-bourgogne.fr

Ingénieur diplômé de l'Ecole Nationale Supérieure de Chimie de Montpellier en Juin 1995, j'ai effectué ma thèse au sein du laboratoire des Lésions des Acides Nucléiques du CEA Grenoble (Octobre 1996 - Avril 1999) et sous la direction des Drs. J. Cadet et D. Gasparutto. En Mai 1999, j'ai intégré l'Unité de Pharmacochimie Moléculaire et Structurale de l'Université Paris 5 (ex UMR CNRS 8600, Dir. Prof. B.-P. Roques) en tant qu'Ingénieur d'Etudes CNRS. Ma mission principale était la maintenance de la plate-forme technologique de synthèse peptidique du laboratoire (constituée de trois synthétiseurs automatiques et quatre chaînes HPLC). En Juin 2001, j'ai décidé de quitter le CNRS et d'accepter un poste de "Senior Scientist" en chimie bio-organique au sein de la société de biotechnologies Manteia Predictive Medicine S.A. (localisée en Suisse et spin-off du groupe Serono) dont le coeur d'activité concernait le développement d'une technologie originale de séquençage à haut débit des acides nucléiques. Une restructuration faisant suite au rachat de Manteia S.A. par un concurrent anglais (Solexa Ltd. qui sera à son tour racheté en Janvier 2007 par la compagnie Illumina, Inc.) m'a conduit à candidater et obtenir un poste de MCF de l'Université de Rouen en Février 2004. J'ai rejoint le Pr. P.-Y. Renard (nommé en Septembre 2003) afin de constituer au sein du laboratoire COBRA (UMR CNRS 6014) une équipe de chimie bioorganique. En Septembre 2013, suite à ma réussite à un concours PU de l'Université de Bourgogne (site de Dijon), j'ai intégré l'Institut de Chimie Moléculaire de l'Université de Bourgogne (ICMUB, UMR CNRS 6302, Directeur : Prof. Franck Denat) et l'équipe "Polyamines, Porphyrines, Développement et Applications" (P2DA, responsable d'équipe : Prof. Claude Gros) pour mener des activités de recherche principalement axées sur le développement d'outils chimiques innovants pour la conception de chemosenseurs et d'agents d'imagerie moléculaire. Précisons également que ma promotion comme PU a aussi coincidé avec ma nomination comme membre junior de l'Institut Universitaire de France (IUF) et ce pour cinq ans (2013-2018). A ce jour, je suis le co-auteur de plus de 90 publications et co-inventeur d'une douzaine de brevets dont trois sont actuellement exploités par la société Illumina dans le contexte de la technologie de séquençage à haut débit "Genome Analyzer"

(1) Développement de nouveaux marqueurs fluorescents efficaces pour l'imagerie biologique.

GA WS DPP

 

 

 

(2) Synthèse in situ de fluorophores organiques pour des applications en biodétection et/ou imagerie moléculaire.

In situ synthesis GA OBC 2017

 

 

 

 

(3) Nouvelles méthodes de bioconjugaison simples et universelles fondées sur l'utilisation de plateformes moléculaires multivalentes.

GA ACIE 2012 Beal Jones

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[84] Romieu A, Gasparutto D, Cadet J. Synthesis and characterization of oligodeoxyribonucleotides containing the two 5R and 5S diastereomers of (5'S,6S)-5',6-cyclo-5,6-dihydrothymidine; radiation-induced tandem lesions of thymidine J. Chem. Soc., Perkin Trans. 1 1999: 1257-1264.
[85] Romieu A, Gasparutto D, Cadet J. Synthesis and Characterization of Oligonucleotides Containing 5',8-Cyclopurine-2'-deoxyribonucleosides : (5'R)-5',8-Cyclo-2'-deoxyadenosine, (5'S)-5',8-Cyclo-2'-deoxyguanosine, and (5'R)-5',8-Cyclo-2'-deoxyguanosine Chem. Res. Toxicol. 1999; 12: 412-421.
[86] D'Ham C, Romieu A, Jaquinod M, Gasparutto D, Cadet J. Excision of 5,6-Dihydroxy-5,6-dihydrothymine, 5,6-Dihydrothymine, and 5-Hydroxycytosine from Defined Sequence Oligonucleotides by Escherichia coli Endonuclease III and Fpg Proteins: Kinetic and Mechanistic Aspects Biochemistry 1999; 38: 3335-3344.
[87] Cadet J, Douki T, Gasparutto D, Gromova M, Pouget JP, Ravanat JL, Romieu A, Sauvaigo S. Radiation-induced damage to DNA: mechanistic aspects and measurement of base lesions Nucl. Instrum. Methods Phys. Res., Sect. B 1999; 151: 1-7.
[88] Cadet J, Bardet M, Berger M, Berthod T, Delatour T, D'Ham C, Douki T, Gasparutto D, Grand A, Guy A, Jolibois F, Molko D, Polverelli M, Ravanat JL, Romieu A, Signorini N, Sauvaigo S. Oxidative base damage to DNA: Recent mechanistic aspects, measurement and repair NATO ASI Series, Series A: Life Sciences 1999; 302: 47-58.
[89] Romieu A, Gasparutto D, Molko D, Cadet J. Site-specific Introduction of (5'S)-5',8-Cyclo-2'-Deoxyadenosine into Oligodeoxyribonucleotides J. Org. Chem. 1998; 63: 5245-5249.
[90] Romieu A, Gasparutto D, Molko D, Cadet J. A convenient synthesis of 5-hydroxy-2'-deoxycytidine phosphoramidite and its incorporation into oligonucleotides Tetrahedron Lett. 1997; 38: 7531-7534.

Brevets :

[1] Fedurco M, Romieu A, Turcatti G. Use of trimesic and benzenetriacetic acids to prepare carboxyl group-containing substrates for immobilization of biomolecules, Solexa Limited, Lynx Therapeutics Inc.
[2] Fedurco M, Romieu A, Turcatti G. Improved method of fluorescence-based nucleic acid sequencing in antioxidant-containing buffer, Solexa Limited.
[3] Renard PY, Romieu A, Massonneau M. Preparation of substituted 1,2-dioxetane biomarkers with luminescent emission and their use, Quidd, Université de Rouen.
[4] Liu X, Milton J, Smith GP, Barnes C, Rasolonjatovo IMJ, Rigatti R, Wu X, Ost TWB, Worsley GJ, Earnshaw DJ, Turcatti G, Romieu A. Preparation of single-stranded templates for nucleic acid sequencing, Solexa Limited.
[5] Renard PY, Romieu A, Richard JA, Massonneau M. Preparation of new pro-fluorescent compounds, particularly peptidyl coumarin and acridinone derivatives, as probes for the detection of protease activity, Quidd, Université de Rouen.
[6] Clavé G, Renard PY, Romieu A, Volland H. Preparation of trifunctional pseudopeptide reagents, especially luminescent reagents, and their bioconjugates, and their use for the functionalization of solid supports for the detection of biomolecules, Commissariat à l'Energie Atomique.
[7] Bouteiller C, Mariani MF, Ronco C, Renard PY, Jean L, Romieu A. Labeled huprine derivatives and their use in medical imaging, Université de Rouen, Advanced Accelerator Applications.
[8] Ronco C, Renard PY, Jean L, Nachon F, Romieu A. Preparation of 7,11-methanocycloocta[b]quinoline derivative as highly functionalizable acetylcholinesterase inhibitors for treating neurological diseases, Université de Rouen.
[9] Priem T, Bouteiller C, Camporese D, Romieu A, Renard P-Y. Preparation of new nucleophile-reactive sulfonated compounds for the radiolabeling of biomolecules; precursors and conjugates thereof, Advanced Accelerator Applications.
[10] Viault G, Dautrey S, Renard P-Y, Romieu A. Reagent including four orthogonal functions and its uses, Université de Rouen.
[11] Orenga S, Chalansonnet V, Chevalier A, Renard P-Y, Romieu A, Roubinet B. Fluorogenic/fluorescent probes derivative from sulfoxanthene, and use thereof, bioMérieux.

(1) Synthèse organique (multi-étapes, photochimique, asymétrique) de molécules très diverses : biomolécules, "cleavable and/or traceless linkers", fluorophores (dérivés acridine, coumarine, cyanine, diazoïque, DPP, oxazine et (hétéro)xanthène), hétérocyles azotés (ligands polypyridine) et organosilanes.

(2) Chimie bio-organique : synthèse de nucléosides, de nucléotides et d'acides aminés modifiés. Modifications "post-synthétiques" (introduction de marqueurs fluorescents, de "PEG and/or cleavable linkers", de fonctions réactives : thiol, ...), photochimie et enzymologie des acides nucléiques. Chimie fine autour de la synthèse peptidique (cyclisation, marquage fluorescent et vectorisation d'inhibiteurs). Techniques de bio-conjugaison ("wet chemistry") appliquées aux acides nucléiques et aux protéines ("click chemistry", ...).

(3) Synthèse automatisée sur support solide : synthèse peptidique (stratégie "Fmoc/tBu", ABI 431A, 433 et Symphony/Multiplex) et synthèse oligonucléotidique ("chimie phosphoramidite", ABI 392).

(4) Chimie de surface : nettoyage, silanisation et fonctionnalisation de surfaces en verre (formats : lames et micro-canaux).

(5) Chimie analytique : purification par HPLC (phase inverse, normale et échangeuse d'ions), purification par chromatographie sur gel d'exclusion (purification de protéines), analyses HPLC, GC, GC-MS, LC-MS, ESI-MS (QUATTRO micro, Micromass, LCQ Advantage MAX (trappe d'ions) et MSQ Plus, Thermo Scientific), caractérisations spectroscopiques IR et RMN 1 et 2D (1H et hétéronoyaux), photophysique (spectres Abs/Ex/Em, rendements quantiques absolus/relatifs et ETE). Développement et validation de procédures QC (contrôle qualité) pour l'analyse (pureté et stabilité) de matières premières (réactifs chimiques).